从新冠病毒爆发之初，到现今本澳疫情趋于稳定，新冠病毒检测成了功臣之一。透过针对不同人群、採集方式和样本数量，新冠检测能够帮助医护人员排查出确诊新冠的患者，并在疗程结束后检验病患是否痊癒。

 随着疫情管控政策的发展，新冠检测和採集的方式种类也越来越多，平常在新闻报道中都提及“单採”、“混採”、“单检”和“混检”，很多民众都会对于它们产生疑惑。究竟这些方式有何异同？哪一个适合一般民众进行检验？準确性又有甚么差别呢？

 首先概述一下整个新冠病毒检测流程，主要有两部分，一个是採样，另一个是检测。採样形式可分为“单採”和“混採”。顾名思义，单採就是指採集单个样本，强调採集的过程中，一个人佔用一个採集管，一支拭子配用一个採集管。那边厢，“混採”与单採不同，混採是在採集过程中，混合多个样本。在医护人员将拭子放入鼻腔或咽喉后，接下来多个受试者的拭子会放入同一个採集管中。混採又跟据放入同一採集管的拭子数分为五合一混採、十合一混採和二十合一混採。混採的过程中，因为各样本未经稀释，所以检测出病毒的準确度是同等的。若该样本呈阴性，即代表混採的十个受试者全数阴性。若样本呈阳性，则卫生部门会召回十位居民再次进行单採，以确定阳性个案。国务院救治组为对混採方法有统一标準，于二○二○年八月和二○二二年一月分别发布《关于印发新冠病毒核酸十合一混採检测技术规範的通知》和《关于印发新冠病毒核酸二十合一混採检测技术规範的通知》，内容指出，根据单採和混採，需要不同份量的保存液。一般而言，单採保存液为三毫升，混採保存液为六毫升。与此同时，根据《澳门特别行政区应对大规模新冠肺炎疫情应急处置预案（第一版）》指出，本澳一般以十合一混採方式进行新冠检测。

 至于检测形式，总括可以理解为经过样本前处理后，样本进入即时聚合酶连锁反应（Real-time PCR，简称RT-PCR）进行检测的过程。一般分为“单检”和“混检”。前者将採集管会作为一个独立样本进行检测，依据检测试剂盒上要求的份量将原始样本加入试剂中进行核酸提取。单检是疫情初期针对高风险人群、隔离人士和新冠感染患者病程监测的检测方式。那边厢，后者所配合採集方式与单检相同，都是以一个人一个採集管为单位，但在放入试剂盒前会进行稀释，多个人佔用一个检测通道，核酸提取完毕后再进行扩增。但混检是在混採还未出台前的次要方案，现在已经基本不会使用了。

 那么，检测数值又有甚么影响？由于“单採”和“单检”没有涉及到保存液的稀释，灵敏度相同；“混採”则由于保存液稀释一倍，骤眼看灵敏度相差一半，但对于平时新闻报道所提及CT值（循环阀值）而言，只增加一个单位（理想情况）。但如果十採一过程，有两个阳性样本，则灵敏度与“单採”和“单检”一样。至于“混检”方面，由于进入RT-PCR之前，检测人员需要按试剂盒要求，将每支保存液稀释到特定体积。以十合一混检为例，每支保存液都要稀释十倍后上机，若其中一个为阳性样本，则检出的CT值（理想值）会比单採单检时增加约三单位。所以不管混採或混检，一旦发现阳性，卫生当局都会对混合样本的受试者进行单独隔离，并进行单採单检。